| 货号 | 规格 | 价格 | 货期 |
|---|---|---|---|
| LTS10965 | 200mL/KIT | 600 510 | 现货 |
密度梯度分离 > 即用型分离液
详细说明
【包装规格】
200ml/Kit
【产品组成】 为方便广大用户使用，试剂内容如下
名称 | 产品编号 | 规格 | |
|---|---|---|---|
A | XXXX动物外周血淋巴细胞分离液 | 200ml | |
B | 样本稀释液（赠品） | 2010C1119 | 200ml |
C | 清洗液（赠品） | 2010X1118 | 200ml |
D | 说明书 | 1份 |
【实验前准备】
1. 适用仪器
最大离心力可达 1200g 的水平转子离心机。
（离心机使用时调整为慢升慢降（具体参数请咨询离心机厂家）建议升速（指开始启动→达 到设定离心力）的时间、降速（指设定离心时间完成→机器完全停止）时间均控制在 3 分钟 左右。）
2. 抗凝剂的选择
在动物实验采血时，很多实验者选择医用真空采血管获得抗凝血，医用采血管中的抗凝剂只考虑血浆质量，但不利于高纯度细胞分离实验（或必须使用枸橼酸钠的医用真空抗凝采 血管）。为此，天津灏洋特别开发出专用实验动物抗凝剂及抗凝管专用于细胞分离，改变使用普 通采血管获得抗凝血分离效果不佳，提取率及纯度低下的不良结果。
序号 | 产品名称 | 产品货号 | 规格 |
|---|---|---|---|
1 | TBDTM 细胞分离专用抗凝剂 | TBDTM-0050 | 100ml |
2 | TBDTM-0200 | 200ml | |
3 | TBDTM-0500 | 500ml | |
4 | TBDTM 实验动物一次性使用负压采 血管(随试剂盒附赠 5 支) | TBDTM-0001 | 5ml/支 |
3. PBMC 最佳分离时间
血液离体后 2 小时内。如达不到 2 小时内分血条件，请务必于 4 小时内进行分血步骤，超过 4 小时很难顺利进行分离。
血液离体时间 | 分离效果 |
|---|---|
2 小时内 | 最佳 |
2-4 小时 | 可接受 |
4-6 小时 | 细胞活性下降，分离效果不佳 |
6 小时以上 | 分离效果极差，直至分离不出细胞 |
4. 分离液的使用环境
a. 分离液需常温（37℃-15℃）避光保存，严禁冷藏冷冻保存；
b. 使用时严格遵守无菌操作规范（超净工作台或生物安全柜内），并在 18℃-22℃环境温 度下进行操作，20℃条件下分离效果最佳。超出此温度范围，有可能使分离液密度发生 改变，造成分离效果不佳。
5. PBMC 高效离心管（详见 PBMC 高效离心管使用说明）
序号 | 产品名称 | 产品货号 | 规格 |
|---|---|---|---|
1 | PBMC 高效离心管/50ml | 601001 | 20 支/盒 |
2 | PBMC 高效离心管/15ml(随试剂盒附赠 5 支) | 601002 | 5 支/包 |
6. 参考值（目的细胞参考范围）
本试剂盒可保证目的细胞的提取率大于 80%，不是纯度。如需获得高纯度目的细胞， 请配合免疫磁珠分选。本试剂盒可减少磁珠的使用量，减少成本。
【检验方法】
全过程样本、试剂及实验环境均需在 20±2℃（试剂需要复温。夏季 20℃， 冬季 25℃。）的条件下进行。
血液样本需要稀释时，实验方法如下：
稀释方法：1 份的 PBS 或样本稀释液(产品编号：2010C1119)加 2 份的血液进行稀释（PBS:抗凝血＝1:2）； 注：稀释液要求：用不含钙镁离子的缓冲液或培养基进行血液稀释。
2.50ml 离心管（包括高效离心管）：
A. 最佳比例：20ml 分离液+ 20ml 稀释过的血液；
B. 最佳离心条件：20℃环境下，650g 离心 30min。
未经稀释的抗凝血分离方法（细胞培养、或需保存血浆推荐用此方法）：
3.使用 15ml 离心管（或 15ml 高效离心管）
A. 15ml 普通离心管最佳比例：5ml 分离液+ 5ml 抗凝血；
B. 15ml 高效离心管最佳比例：4ml 分离液+ 5ml 抗凝血； C. 最佳离心条件：20℃环境下，600g 离心 25min。
注：获得纯度较高的血浆：离心后，吸取血浆层由上至下的 2/3 处血浆，下 1/3 处血浆可能 包含部分 PBMC 及少量分离液成分；
4.使用 50ml 离心管（或 50ml 高效离心管）
A. 50ml 普通离心管最佳比例：20ml 分离液+ 20ml 抗凝血；
B. 50ml 高效离心管最佳比例：15ml 分离液+ 20ml 抗凝血；
C. 最佳离心条件：20℃环境下，600g 离心 30min。
注：获得纯度较高的血浆：离心后，吸取血浆层由上至下的 2/3 处血浆，下 1/3 处血浆可能 包含部分 PBMC 及少量分离液成分。
实验后续方案
1.离心后，离心管中由上至下分为四层。第一层为血浆层。第二层为环状乳白色（“XX” 动物）淋巴细胞层。第三层为透明分离液层。第四层为红细胞层。
2. ①小心吸取血浆层转移到新离心管 A 中。
②小心吸取离心管中的环状乳白色（“XX”动物）淋巴细胞层转移到新离心管 B 中。
3. 向含有（“XX”动物）淋巴细胞的离心管 B 中，加入 10ml 清洗液（产品编号：2010X1118），
混匀细胞。
4. 250g，离心 10min。弃去上清。
5. 用吸管吸取 5ml 清洗液（产品编号：2010X1118）重悬所得细胞。
6. 250g，离心 10min，弃去上清。
重复清洗两次，弃去上清，用 0.5ml 清洗液（产品编号：2010X1118）或根据下一步实验要求加入相对应液体，重悬所得细胞。
分离图例
【分离过程中可能出现的情况及处理方案】
情况一：淋巴细胞层混杂红细胞
1. 吸取有红细胞混杂的淋巴细胞层。
2. 取 15 毫升离心管加入红细胞混杂的淋巴细胞层，根据红细胞残余数量酌情加入 5-8 倍 红细胞裂解液。
a. 如有红细胞混杂则加入适量红细胞裂解液（产品编号：NH4CL2009 需另购）将红细胞裂 解（具体方法见“红细胞裂解液使用说明”）即得目的细胞。
b. 参考红细胞裂解液说明书操作。少时多次裂解后获得淋巴细胞。
【注意事项】
1. 本实验最好不使用高聚合材质（如聚苯乙烯）的塑料制品，应使用无静电、低静电离心 管及未经碱处理过后的玻璃制品，因为静电作用将导致细胞贴壁、碱处理的玻璃表面会 变成毛面，影响细胞分离效果。
2. 吸取过多的淋巴细胞层及分离液层会导致分离液交界处的粒细胞被吸出从而使混杂的粒 细胞数量增加。
3. 吸取过多的淋巴细胞层上层溶液会导致血浆蛋白及血小板混杂。
4. 不当的稀释方法会降低细胞得率及活性。稀释液要求：不含钙镁离子的缓冲液或培养基。 血液样本经过稀释则分离过程中需适当降低离心力和离心时间。
5. 如实验后细胞得率或活性过低，请联系技术支持。
【储存条件及有效期】
常温保存，有效期 2 年。本品易感染细菌，需无菌条件操作。无菌条件下操作，启 封后置常温保存。如 4℃保存，本分离液易出现白色结晶，影响分离效果。
【参考值（参考范围）】 本实验淋巴细胞提取率大于 80%。
【可能存在的问题及解决方法】
1. 由于血液粘度、细胞密度等差异可能造成的问题及解决方案如下表所示：
出现情况 | 出现原因 | 建议解决方案 |
|---|---|---|
离心后目的细胞存在于血浆层或稀释液层 | 转速过小或离心时间过短 | 适当增减转速 |
离心后目的细胞存在于分离液中 | 转速过大或离心时间过长 | |
离心后白环层弥散 | 细胞密度过大 | 调整细胞密度 |
离心后白环层太浅或看不见 | 细胞密度过小 |
2. 离心力公式及单位换算
3. 本分离液分离细胞的原理为密度梯度离心，其密度与温度、大气压等密切相关。不同地
区客户可根据当地情况对离心条件进行适当调整。建议对离心条件进行调整时，恒定离 心时间，对离心转速进行调整。
4. 本分离液依照国际标准，全部使用药用级原料，性能指标与国产同类产品略有不同，可 能出现红细胞沉降不完全的情况，可以适当加大离心转速。
注：在对离心条件进行调整时，离心转速的加减以 50-100g 为基数，直至达到最佳分离效果， 离心力最小不得小于 400g，最大不得大于 1200g。离心时间以 20-30min 为准。
备注：2022.1125-3