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密度梯度分离 > 即用型分离液

小鼠  淋巴细胞  肿瘤浸润组织  

小鼠肿瘤浸润组织淋巴细胞分离液试剂盒

品牌:索莱宝/Solarbio

储存:RT,避光

货号规格价格货期
P9000200mL/Kit800  560现货

详细说明


规格:200 mL/kit
保存:本产品对光敏感,应该室温避光储存,保质期 2 年。无菌开封后,保存于室温。
试剂盒组成: 
各种动物肿瘤浸润组织淋巴细胞分离液 200mL
全血及组织稀释液 200mL
细胞洗涤液 200mL
淋巴细胞分离方法 
1. 制备肿瘤浸润组织的单细胞悬液。
2. 取一支适当的离心管,加入与肿瘤浸润组织单细胞悬液等量的分离液(分离液最少不得少于3mL,总体积不能超过离心管的三分之二,否则会影响分离效果)。
3. 小心吸取单细胞悬液加于分离液液面上,注意保持两液面界面清晰。(可以使用巴氏德吸管吸取单细胞悬液,然后小心的平铺于分离液上,因为两者的密度差异,将形成明显的分层界面。)
4. 室温,500~900g,离心20~30min。(根据肿瘤浸润组织单细胞悬液的量确定离心条件,单细胞悬液量越大,离心力越大,离心时间越长,具体离心条件可以自行摸索,以达到最佳分离效果)。
5. 离心后,此时离心管中由上至下细胞分四层。第一层为稀释液层;第二层为环状乳白色淋巴细胞层;第三层为透明分离液层;第四层为红细胞层。
6. 用吸管小心吸取第二层环状乳白色淋巴细胞至另一洁净的15mL离心管中,向离心管中加入10ml细胞洗涤液洗涤白膜层细胞,250g,离心10min。
7. 弃上清,5mL的PBS或细胞清洗液重悬细胞,250g,离心10min。
8. 重复步骤7
9. 弃上清,细胞重悬备用。


肿瘤浸润组织单细胞悬液的制备方法 
肿瘤浸润组织研磨的方法:
1. 无菌条件下摘取肿瘤浸润组织,用眼科剪将肿瘤浸润组织剪成小块。
2. 将尼龙筛网或者是细胞过滤筛放置于平皿上,加入少量全血及组织稀释液(保证肿瘤浸润组织及获得的细胞处于液体环境中)。
3. 将肿瘤浸润组织放置于筛网上,使用注射器活塞或者是无菌镊子来研磨肿瘤浸润组织(尽量控制研磨力度,保持筛网悬空,避免在皿底上直接研磨而造成大批细胞死亡)
4. 研磨完全后使用全血及组织稀释液冲洗筛网,收集细胞悬液,再经滤网过滤。
注:
A. 可用酶消化法,使用胶原酶对肿瘤浸润组织组织进行消化,得到单细胞悬液。
B. 如果最终得到的细胞需要培养,那全过程所需试剂与器材均要求无菌。
C. 根据肿瘤浸润组织的体积控制单细胞悬液的浓度在108~109个/ml。
注意事项: 
A. 开封前颠倒混匀,本分离液为无菌产品,为延长分离液保存时间,请在无菌条件下启封,避免微生物污染。
B. 分离液使用时应始终保持室温(18℃~25℃),如室内温度较低,可将分离液预热。4℃或者是温度较低的条件下离心,可能会导致白膜层中红细胞污染加重。
C. 待分离的组织要求新鲜,避免冷冻和冷藏。
D. 部分塑料制品(如聚苯乙烯)因其带有的静电作用,可能会导致细胞挂壁,影响分离效果。
E. 如果要进一步对分离的细胞进行培养,那在制备单细胞悬液和分离过程中,注意无菌操作,避免微生物污染。
参考文献: 
1. Boyum A. Separation of leucocytes from blood and bone marrow. Scand J Clin Lab Invest Suppl. 1968; 97: 7.
2. Ting A, Morris PJ. A technique for lymphocyte preparation from stored heparinized blood. Vox Sang. 1971 Jun; 20(6): 561-3.
3. Boyum A. Separation of Blood Leucocytes, Granulocytes and Lymphocytes Tissue Antigens. 1974; 4(4): 269-74.
4. Weisbart RH, Webb WF, Bluestone R, Goldberg LS. A simplified method for lymphocyte separation. Vox Sang. 1972; 23(5): 478-80.
5. Recalde HR. A simple method of obtaining monocytes in suspension. J Immunol Methods. 1984 Apr 13;69(1):71-7.
6. BøyumA,LøvhaugD,TreslandL.Separation of leucocytes: improved cell purity by fine adjustments of gradient medium density and osmolality. Scand J Immunol. 1991 Dec; 34(6):697-712. 
7. Harris R, Ukaejiofo EO. Tissue typing using a routine one-step lymphocyte separation procedure. Br J Haematol. 1970 Feb; 18(2):229-35.